Application of ovopel and ovaprim and their combinations in controlled reproduction of two reophilic cyprinid fish species

Polish Journal of Natural Sciences

Volumn 24, Issue 4, 2009, Pages 235-244

  Zarski, Daniel ^a   Kucharczyk, Dariusz ^a   Targońska, Katarzyna ^a   Jamróz, Marta ^a   Krejszeff, Sławomir ^a   Mamcarz, Andrzej ^a  

^a UNIVERSITY OF WARMIA AND MAZURY IN OLSZTYN   (Poland)

Author keywords

Dace; GnRHa; Hormonal stimulation; Ide; Unsticking eggs

Indexed keywords

CYPRINIDAE; LEUCISCUS IDUS; LEUCISCUS LEUCISCUS;

EID: 75649107773     PISSN: 16439953     EISSN: None     Source Type: Journal    
DOI: 10.2478/v10020-009-0022-x     Document Type: Article

References (51)

1. BABIAK I., GLOGOWSKI J., KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 1998. Cryopreservation of sperm from asp Aspius aspius. Progr. Fish-Cult., 60: 146-148.
2. BRZUSKA E., BIENIARZ K. 1977. Metoda przeżyciowego określania dojrzałości płciowej samic karpia w zwia̧zku z iniekcjami homogenatu przysadki mózgowej karpia. Broszura IRS, Olsztyn, nr 105.
3. BRZUSKA E, ADAMEK J. 1999. Artificial spawning of European catfish, Silurus glanis L.: stimulation of ovulation using LHRH-α, Ovaprim and carp pituitary extract. Aquacult. Res., 30: 59-64.
4. 6) GnRH ProNHEt (Kobarelin). Aquacult. Res., 31: 457-465.
5. BRZUSKA E. 2005. Artificial spawning of carp (Cyprinus carpio L.): differences between females of Polish strain 6 and Hungarian strain W treated with carp pituitary homogenate, Ovopel or Dagin. Aquacult. Res., 36: 1015-1025.
6. 9] GnRH-a (Lecirelin). Aquacult. Res., 37: 264-271.
7. CEJKO B.I., GLOGOWSKI J., KOWALSKI R.K., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K. 2008a. Description of pikeperch, Sander Lucioperca L., semen obtained from males held under different rearing conditions. Arch. Pol. Fish., 16(1): 93-100.
8. CEJKO B.I., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., KUBIAK D., STAROSIEK B., GLOGOWSKI J. 2008b. Quality parameters and selected biochemical markers of asp, Aspius aspius (L.), semen obtained after hormonal stimulation with Ovaprim or Ovopel. Arch. Pol. Fish., 16(2): 179-188.
9. CEJKO B.I., KOWALSKI R.K., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., KREJSZEFF S., ŻARSKI D., GLOGOWSKI J. 2009. Influence of the length of time after hormonal stimulation on selected parameters of milt of ide Leuciscus idus L. Aquacult. Res. (in press).
10. CIEŚLA M. 1998. Wyniki badań nad opracowaniem metodyki sztucznego rozrodu jazia, Leuciscus idus. [W:] Karpiowate ryby reofilne. H. Jakucewicz, R. Wojda, Wyd. PZW, Warszawa, 41-49.
11. GLOGOWSKI J., BABIAK I., KUCHARCZYK D., ŁUCZYŃSKI M. 1997. The effect of individual male variability on cryopreservation of bream (Abramis brama (L.)) sperm. Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 281-285. (Pubitemid 127654702)
12. GLOGOWSKI J., BABIAK I., KUCHARCZYK D., ŁUCZYŃSKI M., PIROS B. 1999. Some properties of bream Abramis brama L. sperm and its cryopreservation. Aquacult. Res., 30: 765-772.
13. HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., KUPREN K., TURKOWSKI K., TARGOŃSKA K., JAMRÓZ M., KREJSZEFF S., KWIATKOWSKI M., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2009. Comparison of economic effectiveness of applying different hormonal preparations for reophile cyprinid fish reproduction stimulation based on the example of asp Aspius aspius (L.) and ide Leuciscus idus (L.). Pol. J. Natur. Sc., 24(4): 224-234.
14. HORVATH L., SZABO T., BURKE J. 1997. Hatchery testing of GnRH analogue. containing pellets on ovulation in four cyprinid species. Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 281-292.
15. JAMRÓZ M., HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., KUCHARCZYK D., KWIATKOWSKI M., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., MAMCARZ A. 2008a. Wpływ stosowania preparatu Ovaprim na efekty pozasezonowego oraz sezonowego rozrodu jazia (Leuciscus idus) w warunkach kontrolowanych. [W:] Biotechnologia w akwakulturze Red. Z. Zakȩś, J. Wolnicki, K. Demska-Zakȩś, R. Kamiński, D. Ulikowski. Wyd. IRS, Olsztyn, 159-164.
16. JAMRÓZ M., KUCHARCZYK D., HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., KREJSZEFF S., KUJAWA R., KUPREN K., KWIATKOWSKI M., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., CEJKO B.I., GLOGOWSKI J. 2008b. Comparison of Ovopel, Ovaprim and LH-RH analogue application effectiveness in controlled reproduction of ide Leuciscus idus (L.). Arch. Pol. Fish., 16(4): 363-370.
17. KOWALSKI R., GLOGOWSKI J., KUCHARCZYK D., GORYCZKO K., DOBOSZ S., CIERESZKO A. 2003. Proteolytic activity and electrophoretic profiles of proteases from seminal plasma of teleosts. J. Fish Biol., 63: 1008-1019.
18. KOWALSKI R., GLOGOWSKI J., KUCHARCZYK D., MAK M., DOBOSZ S., ZAKȨŚ Z., CIERESZKO A. 2004. Characterization of gelatinolytic activity in seminal plasma of some teleost fish. Aquacult. Int., 12: 57-68.
19. KREJSZEFF S., KUCHARCZYK D., KUPREN K., TARGOŃSKA K., MAMCARZ A., KUJAWA R., KACZKOWSKI Z., RATAJSKI S. 2008. Reproduction of chub, Leuciscus cephalus L., under controlled conditions. Aquacult. Res., 39: 907-912.
20. KREJSZEFF S., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2009. Domestication affects spawning of the ide (Leuciscus idus)-preliminary study. Aquaculture, 295: 145-147.
21. KUCHARCZYK D. 1999. Genetic inactivation of ide (Leuciscus idus L.) sperm using UV irradiation. Cytobios, 392: 149-158.
22. KUCHARCZYK D. 2001. Genetic inactivation of Leuciscus idus L. (ide) oocytes using UV irradiation. Cytobios, 407: 189-195.
23. KUCHARCZYK D. 2002. Rozród kontrolowany i androgeneza wybranych gatunków ryb karpiowatych. Rozpr. i monogr., 63, p. 81. Wyd. UWM, Olsztyn.
24. KUCHARCZYK D., JANKUN M., ŁUCZYŃSKI M. 1997a. Ploidy level determination in genetically manipulated bream, Abramis brama, based on the number of active nucleoli per cell. J. Appl. Aquacult., 7: 13-21.
25. KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E. 1997b. Artificial spawning in bream (Abramis brama (L.)). Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 203-207.
26. KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E. 1997c. Induced spawning in rudd (Scardinius erythrophthalmus L.). Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 209-213.
27. KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E., ULIKOWSKI D. 1999. Artificial spawning of ide Leuciscus idus under controlled conditions. EJPAU 2(2): 05 (www.ejpau.media.pl).
28. KUCHARCZYK D., KRÓL R., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E., SZCZERBOWSKI A., ŁUCZYŃSKI M.J. 2000. Out of season spawning of ide (Leuciscus idus L.) under controlled conditions. Europ. Aquacult. Soc., Spec. Publ. 28, 353-353
29. KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., TARGOŃSKA-DIETRICH K., WYSZOMIRSKA E., GLOGOWSKI J., BABIAK I., SZABO T. 2005. Induced spawning in bream (Abramis brama L.) using pellets containing GnRH. Czech J. Anim. Sci., 50: 89-95.
30. KUCHARCZYK D., BOREJKO A., TARGOŃSKA K., ROŻEK W., CHWALCZYK R., KOWALSKI R., GLOGOWSKI J. 2007. Wpływ Ovaprimu na efekty rozrodu jazia (Leuciscus idus). [W:] Rozród, podchów, profilaktyka ryb jeziorowych i innych gatunków Red. J. Wolnicki, Z. Zakȩś, R. Kamiński, Wyd. IRS, Olsztyn, 31-35.
31. KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., HLIWA P., GOMUŁKA P., KWIATKOWSKI M., KREJSZEFF S., PERKOWSKI J. 2008. Reproductive parameters of common carp (Cyprinus carpio L) spawners during natural season and out-of-season spawning. Reprod. Biol., 8(3): 285-289.
32. KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 1999. A model system for keeping spawners of wild and domestic fish before artificial spawning. Aquacult. Eng., 20: 85-89.
33. KUJAWA R., JAMRÓZ M., MAMCARZ A., KUCHARCZYK D. 2007. Rozród płoci w warunkach kontrolowanych. In: Rozród, podchów, profilaktyka ryb jeziorowych i innych gatunków Red. J. Wolnicki, Z. Zakȩś, R. Kamiński. Wyd. IRS, Olsztyn, 15-22.
34. KUPREN K., TURKOWSKI K., KUCHARCZYK D., KREJSZFF S., ŻARSKI D., HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., TARGOŃSKA K., KWIATKOWSKI M., JAMRÓZ M., CZARKOWSKI T. 2008. Economic aspects of rearing larval asp, Aspius aspius (L.), and ide, Leuciscus idus (L.), in closed recirculating systems. Arch. Pol. Fish., 16(4): 413-420.
35. LEU M.-Y, CHOU Y.-H. 1996. Induced spawning and larval rearing of captive yellowfin porgy, Acanthopagrus latus (Houttuyun). Aquaculture, 143: 155-166
36. LINHART O., RODINA M., KOCOUR M., GELA D. 2006. Insemination, fertilization and gamete management in tench, Tinca tinca (L.). Aquacult. Int., 14: 61-73.
37. OLSEN K.H., SAWISKY G.R., STACEY N.E. 2006. Endocrine and milt responses of male crucian carp (Carassius carassius L.) to periovulatory females under field conditions. Gen. Comp. Endocrinol., 149: 294-302.
38. PHILIPPART J.C. 1995. Is captive breeding an effective solution for the preservation of endemic species? Biol. Conserv., 72: 281-295.
39. SZABO T. 2003. Ovulation induction in northern pike Esox lucius L. using different GnRH analogues, Ovaprim, Dagin and carp pituitary. Aquacult. Res., 34: 479-486.
40. SZABO T., MEDGYASSZAY C., HORVA'TH L. 2002. Ovulation induction in nase (Chondrostoma nasus, Cyprinidae) using pituitary extract or GnRH analogue combined with domperidone. Aquaculture, 203: 389-395.
41. TARGOŃSKA-DIETRICH K., ZIELAZNY T., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A., KUJAWA R. 2004. Out-of-season spawning of cultured ide (Leuciscus idus L.) under controlled conditions. EJPAU 7(2): 02 (www.ejpau.media.pl).
42. TARGOŃSKA K., KUCHARCZYK D., KRASUCKA A., MAMCARZ A. 2005. Artificial reproduction of minnow (Phoxinus phoxinus) in captivity. Aquaculture Europe 2005 Conference "Optimizing the Future", Trondheim, Norway, 5-8.
43. TARGOŃSKA K., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A., GLOGOWSKI J., KREJSZEFF S., PRUSIŃSKA M., KUPREN K. 2008. Influence of individual variability in the percentage of motile spermatozoa and motility time on the survival of embryos of chosen fish species. Pol. J. Natur. Sc., 23(1): 178-187.
44. TURKOWSKI K., KUCHARCZYK D., KUPREN K., HAKUĆ- BŁAŻOWSKA A., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KWIATKOWSKI M. 2008. Economic aspects of the experimental rearing of asp, Aspius aspius (L.), ide, Leuciscus idus (L.), and dace, Leuciscus leuciscus (L.), under controlled conditions. Arch. Pol. Fish., 16(4): 397-411.
45. ULIKOWSKI D. 2004. European catfish (Silurus glanis L.) reproduction outside of the spawning season. Arch. Pol. Fish., 12(2): 121-131.
46. VIVEIROS A.T.M., FESSEHAYE Y., TER VELD M., SZULTZ R.W., KOMEN J. 2002. Hand-stripping of semen and semen quality after maturational hormone treatments, in African catfish Clarias gariepinus. Aquaculture, 213: 373-386.
47. WOJTCZAK M., GLOGOWSKI J., KOŁDRAS M., KUCHARCZYK D., CIERESZKO A. 2003. Characterization of protease inhibitors of seminal plasma of cyprinids. Aquat. Liv. Res., 16 (5): 461-465.
48. YARON Z. 1995. Endocrine control of gametogenesis and spawning induction in the carp. Aquaculture, 129: 49-73.
49. YARON Z., BOGOMOLNAYA A., DRORI S., BITON I., AIZEN J., KULIKOVSKY Z., LEVAVI-SIVAN B. 2009. Spawning Induction in the Carp. Past Experience and Future Prospects - A Review. Israeli J. Aquacult. - Bamidgeh, 61(1): 5-26.
50. ŻARSKI D., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., CHWALUCZYK R., KREJSZEFF S., KWIATKOWSKI M., JAMRÓZ M. 2008a. Wpływ środka hormonalnego Ovaprim na efektywność rozrodu bolenia (Aspius aspius) w warunkach kontrolowanych. [W:] Biotechnologia w akwakulturze Red. Z. Zakȩś, J. Wolnicki, K. Demska-Zakȩś, R. Kamiński, D. Ulikowski, Wyd. IRS, Olsztyn, 153-158.
51. ŻARSKI D., TARGOŃSKA K., RATAJSKI S., KACZKOWSKI Z., KUCHARCZYK D. 2008b. Artificial reproduction of nase, Chondrostoma nasus (L.), in captivity. Arch. Pol. Fish., 16(4): 355-362.