Use of single-cell detritus (SCD) produced from Laminaria saccharina (L.) Lamouroux in feeding Ruditapes decussatus (L., 1758) seed clam;Utilización de biotransformados de Laminaria saccharina (L.) Lamouroux en la alimentación de la semilla de la almeja Ruditapes decussatus (L., 1758)

Boletin - Instituto Espanol de Oceanografia

Volumn 18, Issue 1-4, 2002, Pages 321-328

  Perez Camacho A ^a   Salinas, J M ^b   Fuertes, C ^b   Delgado, M ^a  

^a Centro Oceanográfico de A Coruña   (Spain)

^b Centro Oceanográfico de Santander   (Spain)

Author keywords

Culture; Detrital cells; Feeding; Laminaria saccharina; Ruditapes decussatus; Single cell detritus (SCD)

Indexed keywords

AQUACULTURE PRODUCTION; CLAM CULTURE; DETRITUS; FEEDING; MICROALGA;

ALGAE; BACTERIA (MICROORGANISMS); BIVALVIA; LAMINARIA; LAMINARIA SACCHARINA; MOLLUSCA; RUDITAPES; VENERUPIS (RUDITAPES) DECUSSATUS;

EID: 0038420042     PISSN: 00740195     EISSN: None     Source Type: Journal    
DOI: None     Document Type: Article

References (30)

1. Albentosa, M., M. J. Fernández-Reiriz, A. Pérez Camacho y U. Labarta. 1998. Growth performance and biochemical composition of Ruditapes decussatus (L.) spat fed on microalgal and wheatgerm flour diets. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 232 (1): 23-37.
2. Albentosa, M. y A. Pérez Camacho. 2002. Valor nutritivo de harinas de macroalgas para el cultivo de semilla de almeja japonesa Ruditapes philippinarum (Adams & Reeve, 1850): pruebas preliminares. En: VIII Congreso nacional de acuicultura: Acuicultura y desarrollo sostenible (22-25 de mayo, 2001. Santander, Cantabria, España). I. Arnal Atarés et al. (eds.) Boletín. Instituto Español de Oceanografía 18(1-4): 281-287.
3. Albentosa, M., A. Pérez Camacho, U. Labarta y M. J. Fénandez-Reiriz. 1997. Evaluation of freeze-droed microalgal diets for the seed culture of Ruditapes decussatus using physiological and biochemical parameters. Aquaculture 154: 305-321.
4. Boyen, C., Y. Bertheau, T. Barbeyron y B. Kloareg. 1990. Preparation of guluronate lyase from Pseudomonas alginovora for protoplast isolation in Laminaria. Enzyme Microb. Technol. 12: 885-889.
5. Cabanas, J. M., J. J. González, A. Pérez Camacho y G. Román. 1979. Estudio del mejillón y de su epifauna asociada en los cultivos flotantes de la Ría de Arosa. III: Observaciones previas sobre la retención de partículas y la biodeposición de una batea. Boletín del Instituto Español de Oceanografía 5: 45-50.
6. Charles, F. 1993. Utilización of fresh detritus derived from Cystoseira nmediterranea and Posidonia oceanica by the deposit-feeding bivalve Abra ovata. J. Exp. Mar: Biol. Ecol. 174: 43-64.
7. Chu, F. L. E., K. L. Webb, D. A. Hepworth y B. B. Casey. 1987. Metamorphosis of larvae of Crassotrea virginica fed microcapsulated diets. Aquaculture 64: 185-199.
8. Coutteau, P. y P. Sorgeloos. 1992. The use of algal substitutes and the requeriments for live algae in the hatchery and nursery rearing of bivalve mollucs: an international survey. J. Shellfish Res. 11 (2): 467-476.
9. Curatolo, A., M. M. Ryan y A. P. Mercer. 1993. An evaluation of performance of Manila clam spat (Tapes philippinarum) feed on different rations of spry-dried algae (Tetraselmis suecica). Aquaculture 112: 179-186.
10. De Pauw, N. 1981. Use and production of microalgae as food for nursery bivalves. En: Nursery Culturing of Bivalve Molluscs. Especial Publication. C. Claus, N. de Pauw y E. Jaspers (eds.) 7: 35-69. European Mariculture Society. Ostende, Bélgica.
11. Duggins, D. O., C. A. Simenstad y J. A. Estes. 1989. Magnification of secondary produccion by kelp detritus in coastal marine ecosystems. Science 245: 170-173.
12. Epifanio, C. E. 1979. Comparison of yeast and algal diets for bivalve mollucs. Aquaculture 16: 187-192.
13. Fraga, F. y F. Vives. 1960. Retención de partículas orgánicas por el mejillón de los viveros flotantes. En: Reunión sobre Producción Marina y Explotación Pesquera 4: 71-73. Instituto de Investigaciones Pesqueras. Vigo, Espan̄a.
14. Jørgensen, C. B. 1990. Bivalve filter feeding: Hydrodynamics, bioenergetics, physiology and ecology. Olsen & Olsen. Fredensborg, Dinamarca: 140 pp.
15. Kloareg, B., M. Polne-Fuller y A. Gibor. 1989. Mass production of viable protoplasts from Macrocystis pyrifera (L.) C. Ag. (Phaeophyta). Plant Science 62: 105-112.
16. Kloareg, B. y R. S. Quatrano. 1987. Enzymatic removal of the cell walls from zygotes of Fucus distichus (L.) Powell (Phaeophyta). Hydrobiologia 151-152: 123-129.
17. Laing, I. y P. F. Millican. 1992. Indoor nursery cultivation of juvenile bivalve mollucs using diets of dried algae. Aquaculture 102: 231-243.
18. Langdon, C. J. y E. T. Bolton. 1984. A microparticulate diet for a suspension-feeding bivalve mollucs Crassostrea virginica (Gmelin). Journal of Marine Ecology 82: 239-258.
19. Langdon, C. y E. Önal. 1999. Replacement of living microalgae with spry-dried diets for the marine mussel Mytilus galloprovincialis. Aquaculture 180: 283-294.
20. Lison, L. 1968. Statistique appliquée à la Biologie experiméntale. Gauthier-Vilar. París: 346 pp.
21. Navarro, E., J. I. P. Iglesias, A. Pérez Camacho y U. Labarta. 1996. The effect of diets of phytoplankton and suspended bottom material on feeding and absorption of raft mussels (Mytilus galloprovincialis Lmk). J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 198: 175-189.
22. Pérez Camacho, A., M. Albentosa, M. J. Fénandez-Reiriz y U. Labarta. 1998. Effect of microalgal and inert (cornmeal and cornstarch) diets on growth performance and biochemical composition of Ruditapes decussatus seed. Aquaculture 160: 89-102.
23. Persoone, G. y C. Claus. 1980. Mass culture of algae, a bottleneck in the nursery culturing of molluscs. En: Algal Biomass. G. Shelef y C. J. Soeder (eds.): 265-285. Elsevier. Amsterdam.
24. Polne-Fuller, M., N. Saga y A. Gibor. 1986. Algal cell, callus and tissue cultures and selection of algal strains. Beih. Nov. Hedwigia 83: 30-36.
25. Snedecor, G. W. y W. C. Cochram. 1971. Métodos estadísticos. Continental. Buenos Aires: 703 pp.
26. Stuart, V., J. G. Field y R. C. Newell. 1982. Evidence for absortion of kelp detritus by the ribbed mussel Aulacomya ater using a new Cr-labelled microsphere technique. Mar. Ecol. Prog. Ser. 9: 263-271.
27. Uchida, M. 1996. Formation of Single Cell Detritus densely covered with bateria during experimental degradation of Laminaria japonica Thalli. Fisheries Science 62 (5): 731-736.
28. Uchida, M., K. Nakata y M. Maeda. 1997. Introduction of detrital food webs into an aquaculture system by supplying single cell algal detritus produced from Laminaria japonica as a hatchery diet for Artemia nauplii. Aquaculture 154: 125-137.
29. Uchida, M. y K. Numaguchi. 1996. Formation of protoplasmic detritus with characteristics favorable as food for secondary animals during microbial decomposition of Ulva pertusa (Chlorophyta) frond. Journal of Marine Biotechnology 4: 200-206.
30. Zar, J. H. 1974. Bioestatistical Analysis. Prentice-Hall. Englewood Cliffs. Nueva Jersey: 620 pp.