Soybean nodulation and yield when co-inoculated with Bacillus subtilis and Bradyrhizobium japonicum/Bradyrhizobium elkanii;Nodulação e rendimento de soja co-infectada com Bacillus subtilis e Bradyrhizobium japonicum/Bradyrhizobium elkanii

Pesquisa Agropecuaria Brasileira

Volumn 34, Issue 9, 1999, Pages 1633-1643

  De Araújo, Fábio Fernando ^a   Hungria, Mariangela ^a,b  

^a EMBRAPA CERRADOS   (Brazil)

^b CNPQ   (Brazil)

Author keywords

Biological control; Biological nitrogen fixation; Glycine max; Inoculant; Inoculation

Indexed keywords

EID: 0033465620     PISSN: 0100204X     EISSN: None     Source Type: Journal    
DOI: 10.1590/s0100-204x1999000900014     Document Type: Article

References (34)

1. ANDRADE, D.S.; HAMAKAWA, P.J. Estimativa do número de células viáveis de rizóbio no solo e em inoculantes por infecção em plantas. In: HUNGRIA, M.; ARAUJO, R.S. (Eds.). Manual de métodos empregados em estudos de microbiologia agricola. Brasília: Embrapa-SPI, 1994. p.63-94.
2. ANDREEVA, I.N.; MANDKHAN, K.; RED'KINA, T.V.; MISHUSTIN, E.N.; IZMAILOV, S.F. Effect of Azospirillum brasilense on formation and nitrogen-fixing activity of bean and soybean nodules. Soviet Plant Physiology, New York, v.38, p.897-904, 1991.
3. ARAÚJO, F.F. Efeito de Bacillus e seus metabólitos na competitividade e nodulação da soja (Glycine max [L.] Merrill) por Bradyrhizobium. Londrina: Universidade Estadual de Londrina, 1995. 117p. Tese de Mestrado.
4. ARAÚJO, F.F.; HENNING, A.; HUNGRIA, M.; LIMA, J. de. Caracterização do potencial antifúngico de Bacillus spp. isolados de solos do Paraná. In: HUNGRIA, M.; BALOTA, E.L.; COLOZZIFILHO, A.; ANDRADE, D.S. (Eds.). Microbiologia do solo: desafios para o século XXI. Londrina: Iapar/ Embrapa-CNPSo, 1995. p.450-455.
5. BETTIOL, W.; KIMATI, H. Efeito de Bacillus subtilis sobre Pyricularia oryzae agente causal de brusone do arroz. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v.25, n.8, p.1165-1174, 1990.
6. BOTTOMLEY, P.J. Ecology of Bradyrhizobium and Rhizobium. In: STACEY, G.; BURRIS, R.H.; EVANS, H.J. (Eds.). Biological nitrogen fixation. New York: Chapman and Hall, 1992. p.293-348.
7. BUCHANAN, R.E.; GIBBONS, N.G. Bergey's manual of determinative bacteriology. Baltimore: The Willians & Wilkens, 1975. 1268p.
8. CAETANO-ANOLLÉS, G.; BAUER, W.D. Enhanced nodule initiation on alfafa by wild-type Rhizobium meliloti co-inoculated with nod gene mutants and other bacteria. Planta, Berlin, v.174, p.385-395, 1988.
9. CATTELAN, A.J.; SPOLADORI, C.L.; HENNING, A.A. Efeito do tratamento de sementes de soja com fungicidas recomendados sobre a fixação do nitrogênio atmosférico e a sobrevivência do Bradyrhizobium japonicum em casa de vegetação. In: HUNGRIA, M.; BALOTA, E.L.; COLOZZI-FILHO, A.; ANDRADE, D.S. (Eds.). Microbiologia do solo: desafios para o século XXI. Londrina: Iapar/Embrapa-CNPSo, 1995. p.398-402.
10. DUNLEAVY, J. Control of damping-off sugar beet by Bacillus subtilis. Phytopathology, Saint Paul, v.45, p.252-258, 1955.
11. EMBRAPA. Centro Nacional de Pesquisa de Soja (Londrina, PR). Recomendações técnicas para a cultura da soja no Paraná, 1996/97. Londrina: Embrapa-Soja, 1996. 187p. (Embrapa-Soja. Documentos, 97).
12. FEIJE, F.; ANGER, V. Spot tests in inorganic analyses. Analytical Chemistry Acta, Netherlands, v.149, p.363-367, 1972.
13. FRED, E.B.; BALDWIN, I.L.; McCOY, E. Root nodule bacteria of leguminous plants. Madison: The University of Wisconsin Press, 1932. 343p.
14. HALVERSON, L.J.; CLAYTON, M.K.; HANDELSMAN, J. Population biology of Bacillus cereus UW85 in the rhizosphere of field-grown soybean. Soil Biology & Biochemistry, Oxford, v.25, p.485-493, 1993.
15. HALVERSON, L.J.; HANDELSMAN, J. Enhancement of soybean nodulation by Bacillus cereus UW85 in the field and in a growth chamber. Applied and Environmental Microbiology, Washington, v.57, p.2767-2770, 1991.
16. HARTMANN, A.; ZIMMER, W. Physiology of Azospirillum. In: OKON, Y. (Ed.). Azospirillum/ plant associations. Boca Raton: CRC Press, 1994. p.15-39.
17. HUNGRIA, M.; VARGAS, M.A.T.; CAMPO, R.J. A inoculação da soja. Londrina: Embrapa-CNPSo, 1997. 20p. (Embrapa-CNPSo. Circular técnica, 17).
18. HUNGRIA, M.; VARGAS, M.A.T.; SUHET, A.R.; PERES, J.R.R. Fixação biológica do nitrogênio na soja. In: ARAÚJO, R.S.; HUNGRIA, M. (Eds.). Microrganismos de importância agrícola. Brasília: Embrapa-SPI, 1994. p.9-89.
19. JORDAN, D.C. Transfer of Rhizobium japonicum Buchanan 1980 to Bradyrhizobium gen. nov., a genus of slow growing root-nodule bacteria from leguminous plants. International Journal of Systematic Bacteriological, Washington, v.32, p.136-139, 1982.
20. KREBS, B.; JUNGE, H.; OCKHARDT, A.; HODING, B.; HEUBNER, D.; ERBEN, U. Bacillus subtilis: an effective biocontrol agent. Pesticide Science, Barking, v.37, p.427-429, 1993.
21. KUYKENDALL, L.D.; SAXENA, B.; DEVINE, T.E.; UDELL, S.E. Genetic diversity in Bradyrhizobium japonicum, Jordan, 1982 and a proposal for Bradyrhizobium elkanii sp. nov. Canadian Journal of Microbiology, Ottawa, v.38, p.501-505, 1992.
22. LI, D.; ALEXANDER, M. Co-inoculation with antibiotic-producing bacteria to increase colonization and nodulation by rhizobia. Plant and Soil, Dordrecht, v.108, p.211-219, 1988.
23. LUZ, W.C. Efeito da microbiolização de sementes no rendimento e controle da podridão comum nas raízes e de patógenos das sementes de trigo. Fitopatologia Brasileira, Brasília, v.19, p.144-148, 1994.
24. McKEEN, C.D.; REILLY, C.C.; PUSEY, P.L. Production and partial characterization of antifungal substances antagonistic to Monilinia fructicola from Bacillus subtilis. Phytopathology, Saint Paul, v.76, p.136-139, 1986.
25. MYTTON, L.R.; SKØT, L. Breeding for improved symbiotic nitrogen fixation. In: HAYWARD, M.D.; BOSEMARK, N.O.; ROMAGOSA, I. (Eds.). Plant breeding: principles and prospects. London: Chapman & Hall, 1993. p.451-472.
26. NISHI, C.Y.M.; HUNGRIA, M. Efeito da reinoculação da soja [Glycine max (L.) Merrill] em um solo com população estabelecida de Bradyrhizobium com as estirpes SEMIA 566, 586, 587, 5019, 5079 e 5080. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v.31, n.5, p.359-368, 1996.
27. OMAR, S.A.; ABD-ALLA, M.H. Enhancement of faba bean nodulation, nitrogen fixation and growth by different microorganisms. Biologia Plantarum, Prague, v.36, p.295-300, 1994.
28. PLAZINSKI, J.; ROLFE, B.G. Analysis of the pectolytic activity of Rhizobium and Azospirillum strains isolated from Trifolium repens. Journal of Plant Physiology, Stuttgart, v.120, p.181-187, 1985.
29. PUSEY, P.L.; WILSON, C.L. Postharvest biological control of stone fruit brown rot by Bacillus subtilis. Plant Disease, Saint Paul, v.68, p.753-756, 1984.
30. SINGH, C.S.; RAO, N.S.S. Associative effect of Azospirillum brasilense with Rhizobium japonicum on nodulation and yield of soybean (Glycine max). Plant and Soil, Dordrecht, v.53, p.387-392, 1979.
31. SOMASEGARAN, P.; HOBEN, H.J. Handbook of rhizobia: methods in legume-Rhizobium technology. New York: Springer-Verlag, 1994. 450p.
32. STREETER, J.G. Failure of inoculant rhizobia to overcome the dominance of indigenous strains for nodule formation. Canadian Journal of Microbiology, Ottawa, v.40, p.513-522, 1994.
33. TRIPLETT, E.W. The molecular genetics of nodulation competitiveness in Rhizobium and Bradyrhizobium. Molecular Plant-Microbe Interaction, Saint Paul, v.3, p.199-206, 1990.
34. TURNER, J.T.; BACKMAN, P.A. Factors relating to peanut yield increases after seed treatment with Bacillus subtilis. Plant Disease, Saint Paul, v.75, p.347-352, 1991.